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WB实验中的转膜与抗体结合步骤详解
蛋白质免疫印迹(Western blot,WB)是一种检测蛋白质表达水平和分子量的技术,WB实验包括样品制备、SDS-PAGE电泳、转膜、抗体结合及显色等多个步骤。
一、转膜
转膜是将SDS-PAGE电泳分离后的蛋白质转移到固定在固相支持物上的过程,转膜方法有向上毛细管转移、向下毛细管转移、电转移和真空转移等;固相支持物主要有硝酸纤维素膜和尼龙膜,硝酸纤维素膜是非共价结合,易脆,而尼龙膜是带正电荷的,高强度,不易破损,具有较大的DNA结合容量,在转膜过程中,需要将分离胶上的蛋白质完全转移到膜上,以便后续的抗体结合和检测。
二、抗体结合
抗体结合是WB实验的核心步骤,主要包括一抗孵育、洗涤、二抗孵育和洗涤等过程。
1. 一抗孵育:将特异性一抗添加到转膜后的膜上,孵育过程中一抗与目标蛋白质发生结合,一抗的浓度和孵育时间需要根据实验需求进行调整;一般情况下,一抗的浓度在1:1000-1:10000之间,孵育时间为1-2小时,在孵育过程中,需要保持膜的湿润,可以使用封闭液或抗体稀释液进行湿润。
2. 洗涤:用缓冲液(如TBST)反复洗涤膜上未结合的一抗,洗涤的次数和时间需要根据实验情况进行调整,一般洗涤3-5次,每次5-10分钟;洗涤的目的是去除未结合的一抗,避免后续的显色反应受到干扰。
3. 二抗孵育:将与一抗匹配的二抗加入到膜上,孵育过程中二抗与一抗结合,二抗的浓度和孵育时间也需要根据实验需求进行调整;一般情况下,二抗的浓度在1:1000-1:10000之间,孵育时间为1-2小时,同样需要保持膜的湿润。
4. 洗涤:用缓冲液(如TBST)反复洗涤膜上未结合的二抗;洗涤的次数和时间需要根据实验情况进行调整,一般洗涤3-5次,每次5-10分钟。
三、注意事项
1. 在转膜过程中,需要控制好转膜电压和时间,以及膜的湿度和尺寸,避免影响蛋白质的转移效率。
2. 在抗体结合过程中,需要注意一抗和二抗的浓度和孵育时间,避免过度或不足结合。
3. 洗涤步骤是去除未结合抗体的重要环节,需要充分洗涤,避免背景杂乱。
4. 实验过程中需要保持膜的湿润,避免膜干燥影响抗体结合。
5. 在显色过程中,需要均匀涂抹ECL显色液,避免显色不均。
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